High всем грибникам 
Сегодня запустил свой парничек в режим плодоношения, а посему решил начать написание репорта.
По ходу репорта буду сразу выделять красным и описывать совершенные ошибки. Делать ошибки - не плохо, они учат намного больше, чем положительный опыт, полученный сразу.
Всем новичкам, убедившись на собственном опыте, рекомендую строго придерживаться технологий, если хотите с наибольшей вероятностью получить урожай. Ну а если экспериментируете, то лучше тщательно обдумать любое изменение, вносимое в стандартный, проверенный процесс.
СОРТ
Psilocybe Cubensis Cambodian
Споры предоставлены магазином GanjaSeeds.org :friend:
БОКС
Решил я серьезно подойти к процессу выращивания, но без излишеств, занимающих много места. По этому сделал главбокс, который по совместительству так же исполняет роли инкубатора и парника.
Для этого использовался полипропиленовый контейнер для белья, размерами 60х40х30см.
В боковой стенке были прорезаны отверстия для рук. Для крепления перчаток и для усиления передней стенки использовал 2 куска ламината. Прорезал в них отверстия для рук и просверлил 20 отверстий для болтов.
Внутреннюю дощечку полностью вскрыл лаком в 2 слоя.
Сами перчатки сажались на клей "момент", на загиб с внешней стороны бокса. А затем зажимались дощечками и затягивались 20 болтами. Стенка получилась очень крепкая, почти не ходит даже при крайнем растягивании перчаток при работе, при их одевании и съеме. 20 болтов равномерно распределяют нагрузку на пластик и не дают образоваться трещинам.
Позже, в торца сделал 2 прямоугольных отверстия, на уровне субстрата. На отверстия были приклеены фильтры из влажной салфетки, выстиранной с бактерицидным мылом, смоченных спиртом и оставленных на несколько часов в зиплоке. На каждый фильтр использовалось 2 салфетки, сложенные вдвое. Т.е. фильтр состоит из 8ми слоев салфетки.
Крепил на алюминиевый скотч.
Внутри, над отверстиями фильтра, на ал.скотч были наклеены 2 зиплока, для защиты фильтров от избыточной влаги и стекающего конденсата.
С другого торца, почти на самом верху, было сделано отверстие и закреплен небольшой куллер от процессора. Посадил на силиконовый герметик и прикрутил родными шурупами.
Подключил блок питания (12В, 650mA) и закрепил шнур все тем же алюминиевым скотчем.
Минуты более чем достаточно, чтоб полностью сменить воздух в боксе.
Для освещения была выбрана мини ЛДС на 10Вт. [ОШИБКА №1: Надо было брать ЭСЛ на 23Вт/6400К]
Для поддержания температуры купил аквариумный нагреватель с терморегулятором Resun SUNLIKE 50, мощностью 50Вт (для 50л аквариума).[ОШИБКА №2: Надо было брать на 75-100Вт, быстрее бы грела при внешних перепадах температуры]
ПРОЦЕСС
Инокуляция и инкубация
04.10.2010
Была подготовлена перловка.
Готовил так: промыл перловку раз 10, до исчезновения мути. Налил воды, добавил 80мл 3% перекиси и оставил на 10 минут. Затем поставил на огонь. После закипания варил 20 минут. После чего воду слил и промыл в дуршлаге под душем, тщательно перемешивая руками. Оставил на 20 минут стекать.[ОШИБКА №3: Надо было оставлять на 10 минут, чтоб немного больше влажности осталось, для испарения при стерилизации]
После этого насыпал на дно банок 0,5см мелкого вермикулита и засыпал перловку, с небольшим добавлением вермика.[ОШИБКА №4: Не нужно было добавлять вермик в зерно, из-за него при перетряхивании мицелий плохо растет возле стенок в вермике]
Банки были закрыты фольгой, в центре сделано отверстие, прикрытое ватой и закрепленное пластырем. Сверху затянуто фольгой.[ОШИБКА №5: Нужно было делать фольгу в 4 слоя, так она легче в обращении, не так рвется иглой. Фильтр нужно было делать цельный а не лепить куски ваты на пластырь]
Дальше стерилизовал в скороварке (7л/диаметр 24см/высота 16см).
Стерилизовал дробно. Первый раз 2ч, через сутки еще 1ч. Оставил на сутки остывать.[ОШИБКА №6: Стерилизовать нужно было 1 раз, а ДО стерилизации просто выдержать зерно сутки в банках]
05.10.2010
Произвел вторую стерилизацию зерна и приготовил споровую взвесь.
Готовил в главбоксе. Весь бокс протер изнутри спиртом, составил все необходимое внутрь, закрыл бокс и залез в перчатки
. Далее опрыскал все поверхности спиртом. Подождал 10 минут и приступил к инокуляции зерна.
Банки предварительно были снабжены кусочками пластыря, для заклеивания отверстия от иглы.
Протер рюмочку спиртом, сполоснул кипяченой водой, набранной в 10 кубовый шприц.[ОШИБКА №7: нужно было протереть рюмку спиртом вне главбокса, набрать в нее кипяченки, занести в бокс, сполоснуть ею рюмку и слить. А шприц остался бы со своими 10мл.]
Оставшиеся 7мл в шприце вылил в рюмку и иголкой соскреб в нее споры с бумаги. Набрал в шприц, и завернул его в тряпочку, которой протирал стенки главбокса. Выждал 12 часов.
06.10.2010
Ночь с 5го на 6е :brow: . Не удержался, решил не ждать до утра, а инокулировать банки. Спать все равно не хотелось .
Проспиртовал главбокс, поставил в него банки с зерном, в шприц (после 12ч) добавил 2мл гентомицина и оставил еще на 1 час.[ОШИБКА №8: Споровую взвесь надо было оставить на сутки, а не на 12ч]
По истечении часа произвел инокуляцию 4х банок - 2 по 1л и 2 по 0,5л.[ОШИБКА №9: Нужно было готовить минимум 3 1л банки для кейсинга и 1 0,5л банку для размножения]
Инокулировал направляя иглу в центр, а не на стенки.[ОШИБКА №10: Инокулировать нужно было именно по краям, чтоб было видно процесс колонизации и чтоб он шел быстрее - со всех сторон к центру]
Далее банки были помещены в инкубатор. В главбокс поставил емкость с водой, куда опустил нагреватель и неплотно прикрыл крышкой. Сверху поставил банки и термо-гигрометр для контроля среды.
У меня оставалось около литра не стерилизованного зерна, которое было отправлено во второй контейнер. Туда, ради эксперимента, плеснул оставшиеся пару капель из шприца со спорами. Стоял этот контейнер просто под столом.
09.10.2010
По истечении 4х дней в банках не было обнаружено признаков жизни. Но в емкости с не стерильной перловкой начал расти мицелий, паутинка и мелкие зачатки синей плесени внутри нескольких зерен.
Решил заразить 1 из 0,5 литровых банок зернышком, обросшим мицелием.
В последствии в той банке вырос и мицелий, и паутинка, и зачатки синей плесени. Банка была выброшена.
Осталось две 1л и одна 0,5л банка. Решил выждать до понедельника (11.10). В понедельник обнаружились признаки мицелия во всех банках. :spin:
14.10.2010
Готовлю субстрат для следующей волны с учетом прошлых ошибок.
Тщательно промыл перловку, залил кипятком и включил газ, после закипания варил 25 минут. Перекись не использовал.
Слил, тщательно промыл под душем 10 минут, оставил стекать 10 минут.
После чего сложил в емкость и убрал в темное прохладное место.
Кейсинг
15.10.2010
Далее готовил покровный субстрат.
В качестве покровного слоя решил использовать кокосовое волокно и вермикулит.
Замочил теплой водой кусок кокосового брикета. Воды налил много. Руками тщательно вымачивал и выжимал кокосовое волокно в 2х водах, чтоб вымыть пыль, грязь и имеющиеся изначально в брикете питательные вещества (чтоб покровный субстрат был намного менее питательнее, чем зерновой слой). После чего отжал кокос и перемешал 50/50 с вермикулитом. Еще раз смочил до нужного содержания влаги (пару капель при сжатии).
Накрыл кастрюльку с субстратом крышкой и отправил в скороварку на стерилизацию на 1,5ч.
После этого разложил по банкам перловку (на этот раз без вермика) и стерилизовал 1 час.
В этот раз сделал крышки другие. Свернул в 4 слоя пищевую фольгу и обернул банку, гвоздем проделал 5 отверстий.
Накрыл фильтром из влажной салфетки (отстиранной от пропитки), 4 слоя.
Сверху обернул фольгой, сложенной в 2 слоя.
16.10.2010
Мицелий активно разрастался, несколько раз банки перетряхивались.
А ночью, с 15 на 16, когда банки заросли на 90%, а покровный и питательный субстраты остыли, было решено кейсить и инокулировать зерном следующий цикл банок.
Для начала произвел инокуляцию новых банок. Составил все (банки, спирт, салфетку, пульвик, ложку) в главбокс, продезинфицировал его спиртом. Подождал 10 минут и приступил к инокуляции.
Снял фольгу с 0,5л банки-донора, наковырял и раскрошил ложкой мицелий, и по очереди открывая банки раскидал 0,25л мицелия по банкам. На этот раз 3 - 1л, 2 - 0,5л, 1 - 0,25л.
Банки вытащил и поставил в главбокс банку с мицелием, кастрюлю с субстратом и емкость для кейсинга. Далее работа шла в открытом главбоксе.
Емкости для кейсинга - 2.5л, нижняя часть оклеена алюминиевым скотчем.
На дно емкости был уложен тонкий (0,3-0,5см) слой подстилочного субстрата.
В первую емкость высыпал литровую банку мица + оставшиеся 0,25л от донорской банки. Слой, увы, получился не очень толстый.
Далее покровный слой, толщина 0,8-1см.
Далее помыл бокс, залил в него 6л воды, опустил нагреватель. На дно поставил банки, а на них поставил емкости. Крышки не плотно прикрыты.
Сверху поставил банки на инкубацию и термогигрометр.
Для поддержания влажности и постоянной циркуляции воздуха использовал свой старый компрессор от DWC. Сделав для него компенсатор гидроудара.
Бокс был завернут в шерстяное одеяло и поставлен между кроватью и батареей.
19.10.2010
Сегодня, т.е. спустя 13 дней после инокуляции и 3 дня после кейсинга, решил открыть емкости и выставить на плодоношение.
Вроде бы пора...
Бокс был перенесен на балкон (утепленный, совмещенный с комнатой).
Врубил компрессор на полную и выставил температуру на нагревателе 25С.
Температуру стараюсь держать 24-25С, влажность 93-96С.
Да, только что немного пропатчил края контейнеров, где образовались щели и полез мицелий. Не хочется, чтоб по стенкам росли аборты или грибы.
Лирическое отступление...
Хотел в этом цикле провести несколько сравнительных экспериментов, но из-за разности количества субстрата в контейнерах, результаты были бы недостоверными.
Планирую проверить некоторые свои мысли по процессу выращивания.
1) Попробовать делать предварительную регидрацию мицелия. Т.е. после укладки мицелия в контейнер, дать ему срастись. А затем залить водой с pH=7.5 с добавлением гипса и:
а) 0,1г/л монофосфата калия
б) гетероауксина (сколько на 1л?)
в) гумата натрия (сколько на 1л?)
На 18 часов при комнатной температуре.
Предрегидрация должна вымыть уже успевшие образоваться продукты жизнедеятельности мицелия и скорректировать немного(?) опустившийся pH. А так же заново увлажнить и обогатить питательную среду.
Гетероауксин (имеющий такое же индольное ядро, как у триптофана и триптамина) увеличивает урожайность вешенки на ~30%).
А гумат натрия увеличивает урожайность на ~100%.
2) Попробовать добавить в зерно или сено перетертый арахис, возможно вместе с "коробочкой". Арахис (и не только) богат триптофаном.
Есть достоверная информация (Билай В.И. "Основы общей микологии"), что триптофан грибом преобразуется в псилоцибин. Т.е. концентрация псилоцибина должна вырасти.
Но это уже на будущее. Есть над чем поработать...
Сегодня запустил свой парничек в режим плодоношения, а посему решил начать написание репорта.
По ходу репорта буду сразу выделять красным и описывать совершенные ошибки. Делать ошибки - не плохо, они учат намного больше, чем положительный опыт, полученный сразу.
Всем новичкам, убедившись на собственном опыте, рекомендую строго придерживаться технологий, если хотите с наибольшей вероятностью получить урожай. Ну а если экспериментируете, то лучше тщательно обдумать любое изменение, вносимое в стандартный, проверенный процесс.
СОРТ
Psilocybe Cubensis Cambodian
Споры предоставлены магазином GanjaSeeds.org :friend:
БОКС
Решил я серьезно подойти к процессу выращивания, но без излишеств, занимающих много места. По этому сделал главбокс, который по совместительству так же исполняет роли инкубатора и парника.
Для этого использовался полипропиленовый контейнер для белья, размерами 60х40х30см.
В боковой стенке были прорезаны отверстия для рук. Для крепления перчаток и для усиления передней стенки использовал 2 куска ламината. Прорезал в них отверстия для рук и просверлил 20 отверстий для болтов.
Внутреннюю дощечку полностью вскрыл лаком в 2 слоя.
Сами перчатки сажались на клей "момент", на загиб с внешней стороны бокса. А затем зажимались дощечками и затягивались 20 болтами. Стенка получилась очень крепкая, почти не ходит даже при крайнем растягивании перчаток при работе, при их одевании и съеме. 20 болтов равномерно распределяют нагрузку на пластик и не дают образоваться трещинам.
Позже, в торца сделал 2 прямоугольных отверстия, на уровне субстрата. На отверстия были приклеены фильтры из влажной салфетки, выстиранной с бактерицидным мылом, смоченных спиртом и оставленных на несколько часов в зиплоке. На каждый фильтр использовалось 2 салфетки, сложенные вдвое. Т.е. фильтр состоит из 8ми слоев салфетки.
Крепил на алюминиевый скотч.
Внутри, над отверстиями фильтра, на ал.скотч были наклеены 2 зиплока, для защиты фильтров от избыточной влаги и стекающего конденсата.
С другого торца, почти на самом верху, было сделано отверстие и закреплен небольшой куллер от процессора. Посадил на силиконовый герметик и прикрутил родными шурупами.
Подключил блок питания (12В, 650mA) и закрепил шнур все тем же алюминиевым скотчем.
Минуты более чем достаточно, чтоб полностью сменить воздух в боксе.
Для освещения была выбрана мини ЛДС на 10Вт. [ОШИБКА №1: Надо было брать ЭСЛ на 23Вт/6400К]
Для поддержания температуры купил аквариумный нагреватель с терморегулятором Resun SUNLIKE 50, мощностью 50Вт (для 50л аквариума).[ОШИБКА №2: Надо было брать на 75-100Вт, быстрее бы грела при внешних перепадах температуры]
ПРОЦЕСС
Инокуляция и инкубация
04.10.2010
Была подготовлена перловка.
Готовил так: промыл перловку раз 10, до исчезновения мути. Налил воды, добавил 80мл 3% перекиси и оставил на 10 минут. Затем поставил на огонь. После закипания варил 20 минут. После чего воду слил и промыл в дуршлаге под душем, тщательно перемешивая руками. Оставил на 20 минут стекать.[ОШИБКА №3: Надо было оставлять на 10 минут, чтоб немного больше влажности осталось, для испарения при стерилизации]
После этого насыпал на дно банок 0,5см мелкого вермикулита и засыпал перловку, с небольшим добавлением вермика.[ОШИБКА №4: Не нужно было добавлять вермик в зерно, из-за него при перетряхивании мицелий плохо растет возле стенок в вермике]
Банки были закрыты фольгой, в центре сделано отверстие, прикрытое ватой и закрепленное пластырем. Сверху затянуто фольгой.[ОШИБКА №5: Нужно было делать фольгу в 4 слоя, так она легче в обращении, не так рвется иглой. Фильтр нужно было делать цельный а не лепить куски ваты на пластырь]
Дальше стерилизовал в скороварке (7л/диаметр 24см/высота 16см).
Стерилизовал дробно. Первый раз 2ч, через сутки еще 1ч. Оставил на сутки остывать.[ОШИБКА №6: Стерилизовать нужно было 1 раз, а ДО стерилизации просто выдержать зерно сутки в банках]
05.10.2010
Произвел вторую стерилизацию зерна и приготовил споровую взвесь.
Готовил в главбоксе. Весь бокс протер изнутри спиртом, составил все необходимое внутрь, закрыл бокс и залез в перчатки
. Далее опрыскал все поверхности спиртом. Подождал 10 минут и приступил к инокуляции зерна.Банки предварительно были снабжены кусочками пластыря, для заклеивания отверстия от иглы.
Протер рюмочку спиртом, сполоснул кипяченой водой, набранной в 10 кубовый шприц.[ОШИБКА №7: нужно было протереть рюмку спиртом вне главбокса, набрать в нее кипяченки, занести в бокс, сполоснуть ею рюмку и слить. А шприц остался бы со своими 10мл.]
Оставшиеся 7мл в шприце вылил в рюмку и иголкой соскреб в нее споры с бумаги. Набрал в шприц, и завернул его в тряпочку, которой протирал стенки главбокса. Выждал 12 часов.
06.10.2010
Ночь с 5го на 6е :brow: . Не удержался, решил не ждать до утра, а инокулировать банки. Спать все равно не хотелось
.Проспиртовал главбокс, поставил в него банки с зерном, в шприц (после 12ч) добавил 2мл гентомицина и оставил еще на 1 час.[ОШИБКА №8: Споровую взвесь надо было оставить на сутки, а не на 12ч]
По истечении часа произвел инокуляцию 4х банок - 2 по 1л и 2 по 0,5л.[ОШИБКА №9: Нужно было готовить минимум 3 1л банки для кейсинга и 1 0,5л банку для размножения]
Инокулировал направляя иглу в центр, а не на стенки.[ОШИБКА №10: Инокулировать нужно было именно по краям, чтоб было видно процесс колонизации и чтоб он шел быстрее - со всех сторон к центру]
Далее банки были помещены в инкубатор. В главбокс поставил емкость с водой, куда опустил нагреватель и неплотно прикрыл крышкой. Сверху поставил банки и термо-гигрометр для контроля среды.
У меня оставалось около литра не стерилизованного зерна, которое было отправлено во второй контейнер. Туда, ради эксперимента, плеснул оставшиеся пару капель из шприца со спорами. Стоял этот контейнер просто под столом.
09.10.2010
По истечении 4х дней в банках не было обнаружено признаков жизни. Но в емкости с не стерильной перловкой начал расти мицелий, паутинка и мелкие зачатки синей плесени внутри нескольких зерен.
Решил заразить 1 из 0,5 литровых банок зернышком, обросшим мицелием.
В последствии в той банке вырос и мицелий, и паутинка, и зачатки синей плесени. Банка была выброшена.
Осталось две 1л и одна 0,5л банка. Решил выждать до понедельника (11.10). В понедельник обнаружились признаки мицелия во всех банках. :spin:
14.10.2010
Готовлю субстрат для следующей волны с учетом прошлых ошибок.
Тщательно промыл перловку, залил кипятком и включил газ, после закипания варил 25 минут. Перекись не использовал.
Слил, тщательно промыл под душем 10 минут, оставил стекать 10 минут.
После чего сложил в емкость и убрал в темное прохладное место.
Кейсинг
15.10.2010
Далее готовил покровный субстрат.
В качестве покровного слоя решил использовать кокосовое волокно и вермикулит.
Замочил теплой водой кусок кокосового брикета. Воды налил много. Руками тщательно вымачивал и выжимал кокосовое волокно в 2х водах, чтоб вымыть пыль, грязь и имеющиеся изначально в брикете питательные вещества (чтоб покровный субстрат был намного менее питательнее, чем зерновой слой). После чего отжал кокос и перемешал 50/50 с вермикулитом. Еще раз смочил до нужного содержания влаги (пару капель при сжатии).
Накрыл кастрюльку с субстратом крышкой и отправил в скороварку на стерилизацию на 1,5ч.
После этого разложил по банкам перловку (на этот раз без вермика) и стерилизовал 1 час.
В этот раз сделал крышки другие. Свернул в 4 слоя пищевую фольгу и обернул банку, гвоздем проделал 5 отверстий.
Накрыл фильтром из влажной салфетки (отстиранной от пропитки), 4 слоя.
Сверху обернул фольгой, сложенной в 2 слоя.
16.10.2010
Мицелий активно разрастался, несколько раз банки перетряхивались.
А ночью, с 15 на 16, когда банки заросли на 90%, а покровный и питательный субстраты остыли, было решено кейсить и инокулировать зерном следующий цикл банок.
Для начала произвел инокуляцию новых банок. Составил все (банки, спирт, салфетку, пульвик, ложку) в главбокс, продезинфицировал его спиртом. Подождал 10 минут и приступил к инокуляции.
Снял фольгу с 0,5л банки-донора, наковырял и раскрошил ложкой мицелий, и по очереди открывая банки раскидал 0,25л мицелия по банкам. На этот раз 3 - 1л, 2 - 0,5л, 1 - 0,25л.
Банки вытащил и поставил в главбокс банку с мицелием, кастрюлю с субстратом и емкость для кейсинга. Далее работа шла в открытом главбоксе.
Емкости для кейсинга - 2.5л, нижняя часть оклеена алюминиевым скотчем.
На дно емкости был уложен тонкий (0,3-0,5см) слой подстилочного субстрата.
В первую емкость высыпал литровую банку мица + оставшиеся 0,25л от донорской банки. Слой, увы, получился не очень толстый.
Далее покровный слой, толщина 0,8-1см.
Далее помыл бокс, залил в него 6л воды, опустил нагреватель. На дно поставил банки, а на них поставил емкости. Крышки не плотно прикрыты.
Сверху поставил банки на инкубацию и термогигрометр.
Для поддержания влажности и постоянной циркуляции воздуха использовал свой старый компрессор от DWC
. Сделав для него компенсатор гидроудара.
Бокс был завернут в шерстяное одеяло и поставлен между кроватью и батареей.
19.10.2010
Сегодня, т.е. спустя 13 дней после инокуляции и 3 дня после кейсинга, решил открыть емкости и выставить на плодоношение.
Вроде бы пора...
Бокс был перенесен на балкон (утепленный, совмещенный с комнатой).
Врубил компрессор на полную и выставил температуру на нагревателе 25С.
Температуру стараюсь держать 24-25С, влажность 93-96С.
Да, только что немного пропатчил края контейнеров, где образовались щели и полез мицелий. Не хочется, чтоб по стенкам росли аборты или грибы.
Лирическое отступление...
Хотел в этом цикле провести несколько сравнительных экспериментов, но из-за разности количества субстрата в контейнерах, результаты были бы недостоверными.
Планирую проверить некоторые свои мысли по процессу выращивания.
1) Попробовать делать предварительную регидрацию мицелия. Т.е. после укладки мицелия в контейнер, дать ему срастись. А затем залить водой с pH=7.5 с добавлением гипса и:
а) 0,1г/л монофосфата калия
б) гетероауксина (сколько на 1л?)
в) гумата натрия (сколько на 1л?)
На 18 часов при комнатной температуре.
Предрегидрация должна вымыть уже успевшие образоваться продукты жизнедеятельности мицелия и скорректировать немного(?) опустившийся pH. А так же заново увлажнить и обогатить питательную среду.
Гетероауксин (имеющий такое же индольное ядро, как у триптофана и триптамина) увеличивает урожайность вешенки на ~30%).
А гумат натрия увеличивает урожайность на ~100%.
2) Попробовать добавить в зерно или сено перетертый арахис, возможно вместе с "коробочкой". Арахис (и не только) богат триптофаном.
Есть достоверная информация (Билай В.И. "Основы общей микологии"), что триптофан грибом преобразуется в псилоцибин. Т.е. концентрация псилоцибина должна вырасти.
Но это уже на будущее. Есть над чем поработать...
.